ГОСТ 30519-97

ГОСТ 30519-97

ГОСТ Р 50480-93

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СТАНДАРТ

ПРОДУКТЫ ПИЩЕВЫЕ Метод выявления бактерий рода Salmonella

Издание официальное

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СОВЕТ ПО СТАНДАРТИЗАЦИИ, МЕТРОЛОГИИ И СЕРТИФИКАЦИИ Минск

ГОСТ 30519-97/ГОСТ I» 50480-93

Предисловие

1    РАЗРАБОТАН И ВНЕСЕН Всероссийским научно-исследовательским институтом консервной и овощесушильной промышленности (ВНИИКОП) и Техническим комитетом по стандартизации ГК 93 «Продукты переработки плодов и овощей»

2    ПРИНЯТ Межгосударственным советом по стандартизации, метрологии и сертификации (протокол № 11 от 23 апреля 1997 г.)

3    Постановлением Госстандарта России от 16 апреля 1998 г. № 122 ГОСТ 30519-97 введен в действие в качестве государственного стандарта Российской Федерации с момента принятия указанного постановления и признан имеющим одинаковую силу с ГОСТ Р 50480-93 на территории Российской Федерации в связи с полной аутентичностью их содержания

4    ВВЕДЕН ВПЕРВЫЕ

5    ПЕРЕИЗДАНИЕ

Настоящий стандарт не может быть полностью или частично воспроизведен, тиражирован и распространен в качестве официального издания на территории Российской Федерации без разрешения Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии

79    II

Группа Н09

МЕЖГОСУДАРСТВЕН» Ы Й СТАНДАРТ

ПРОДУКТЫ ПИЩЕВЫЕ Метол выявления бактерий рола Salmonella

Food products.

Method for detection of Salmonella

MKC' 07.100.30 О КС ТУ 9109

Дата введения 1994—01—01

Настоящий стандарт распространяется на пищевые продукты и устанавливает метод выяаае-ння в определенной навеске продукта бактерий рода Salmonella.

1    Сущность метода

Метод выявления бактерий рода Salmonella основан на высеве определенного количества продукта в жидкую неселективную среду, инкубировании посевов, последующем выявлении в этих посевах бактерий, способных развиваться в жидких селективных средах, образующих типичные колонии на агаризованных дифференциально-диагностических средах, имеющих типичные для бактерий рода Salmonella биохимические и серологические характеристики.

2    Отбор и подготовка проб

Отбор и подготовка проб - по ГОСТ 26668. ГОСТ 26669 или по нормативно-технической документации на анализируемый продукт.

3    Аппаратура, материалы, реактивы

Дня проведения анализа применяют аппаратуру, материалы и реактивы по ГОСТ 10444.1. а также указанные ниже:

весы лабораторные общего назначения с метрологическими характеристиками по ГОСТ 24104'¹ с наибольшим пределом взвешивания 200 г, 2-го класса точности (для взвешивания реактивов):

весы лабораторные общего назначения с метрологическими характеристиками по ГОСТ 24104 с наибольшим пределом взвешивания 1 кг, 4-го класса точности (для взвешивания продукта); микроскоп световой биологический с увеличением 900—1000'; петлю бактериологическую; стекла предметные по ГОСТ 9284; стекла покровные по ГОСТ 6672;

термостат с диапазоном рабочих температур 28 'С-55 "С, позволяющий поддерживать заданную температуру с допустимой погрешностью ±1 'С. спирт иэобутиловый по ГОСТ 9536; бриллиантовый зеленый; желчь сухую или натуральную;

* С I июля 2002 г. введен в действие ГОСТ 24104-2001 (здесь и далее).

1

80

ГОСТ 30519-97/ГОСТ Р 50480-93

контрольный штамп бактерий рода Salmonella , не относящихся к тифозной группе:

магний хлористый по ГОСТ 4209;

мочевину по ГОСТ 6691:

сухие агглютинирующие адсорбированные поливалентные сальмонеллеише сыворотки основных групп А, В. С, D, Е и редких групп;

феноловый красный.

4 Подготовка к анализу

4.1    Приготовление растворов и реактивов

4.1.1    Раствор бриллиантового зеленого концентрации 5 г/дм³: 0.5 г бриллиантового зеленого переносят в фарфоровую ступку и постепенно растворяют п дистиллированной воде. Раствор переливают в мерную колбу вместимостью 100 см* и доводят дистиллированной водой до метки. Раствор хранят в закрытом сосуде из темного стекла при комнатной температуре не более 3 мес.

4.1.2    Раствор фенолового красного концентрации 4 г/дм0.4 г фенолового красного переносят в фарфоровую ступку и постепенно растворяют в дистиллированной воде. Раствор переливают в мерную колбу вместимостью 100 см³ и доводят дистиллированной водой до метки. Раствор хранят в закрытом сосуде из темного стекла при комнатной температуре не более 3 мес.

4.1.3    Реактив Эрлиха: 1,0 г парадиметиламинобензальдегида растворяют в 95 см' этилового спирта объемной концентрации ЧЬ% и прибавляют 80 см⁵ концентрированной соляной кислоты (р = 1.18—1.19 г/см⁵).

4.1.4    Реактив Ковача: перемешивают 5.0 г парадиметиламинобензальдегида, 25 см³ концентрированной соляной кислоты и 75 см⁵ изобутиловото спирта.

4.1.5    Спиртовой раствор «-нафтола концентрации 50 г/дм³: 5,0 г «-нафтола помещают в колбу вместимостью 100 см³, растворяют в этиловом спирте объемной концентрации 96 % и доводят раствор этиловым спиртом до метки. Раствор готовят непосредственно перед применением.

4.1.6    Спиртовой раствор фенолового красного концентрации 2 г/дм³: 0.2 г фенолового красного переносят в колбу вместимостью 100см', растворяют в этиловом спирте объемной концентрации 50 % и доводят раствор этиловым спиртом до метки.

4.1.7    Сухие агглютинирующие адсорбционные поливалентные сальмонеллезные сыворотки готовят перед употреблением по прописи, указанной в прилагаемом к ним наставлении.

4.2 Приготовление питательных сред

4.2.1    Забуфереиная пептон пая вода: 10,0 г пептона, 5,0 г хлористого натрия, 9.0 г дву замещенного фосфорно-кислого натрия (Na,HP0₄ • 12Н.О). 1,5 г одно замещенного фосфорно-кислого калия растворяют при нагревании в 1000 см³ дистиллированной воды, устанавливают pH так. чтобы после стерилизации он составлял при температуре 25 *С 7,0±0,1. Разливают по колбам в количестве, зависящем от навески анализируемого продукта (если навеска равна 25 г. то разливают по 225 см\ то есть 1 : 9), и стерилизуют при температу ре (121 ±1) *С в течение 20 мин.

4.2.2    Магниевая среда: готовят путем соединения трех растворов.

Приготовление раствора 1:8,4 г пептона, 14.3 г хлористого натрия. 40 см³ дрожжевого экстракта, приготовленного по ГОСТ 10444.1. 2,85 г однозамешенного фосфорно-кислого калия растворяют при нагревании в 1780 см'дистиллированной воды.

Приготовление раствора 2: 71,4 г хлористого магния (MgCl, • 6Н.О) растворяют при нагревании в 180 см'дистиллированной воды.

Раствор 3: берут 1.8 см' раствора бриллиантового зеленого, приготовленного по 4.1.1.

Приготовленные растворы соединяют, устанавливают pH так, чтобы после стерилизации он составлял при температуре 25 *С 7,2±0,2. разливают в колбы или флаконы по 100 см³ и стерилизуют при температу ре (112±1) *С в течение 30 мин.

4.2.3    Селенитовая среда: готовят из двух растворов.

Приготовление раствора 1: 5,0 г пептона. 7,0 безводного двузамещенного фосфорно-кислого натрия. 3,0 г безводного однозамешенного фосфорно-кислого натрия, 4,0 г лактозы растворяют при нагревании в 1000 см' дистиллированной воды, охлаждают до 45 *С —55 “С, если необходимо, путем изменения соотношения фосфатных солей устанавливают pH 7,0±0,1. Среду разливают по 100 см³ в колбы или флаконы и стерилизуют текучим паром по 30 мин в течение двух дней или при температуре (112+1) 'С в течение 30 мин.

SI

ГОСТ30519—97/ГОСТ 1* 50480-93

Приготовление раствора 2: 10.0 г кислого селенисто-кислого натрия (NaHSeO,) растворяют асептически в 100 см⁵ стерильной дистиллированной воды. Раствор готовят непосредственно перед употреблением.

Приготовление среды: к 100 см^? раствора I прибавляют 4 см³ раствора 2.

Стерилизация приготовленной среды не допускается, так как при этом происходит редукция кислого селенисто-кислого натрия, выпадает осадок красного цвета и среда становится непригодной. Селенитовая среда выпускается в сухом виде и готовится по прописи, указанной на этикетке.

4.2.4    Тетратионатная среда ( Мю.иер - Кауфман)

Приготовление основы среды: в 100 см’ мясо-пептонного бульона, приготовленного по ГОСТ 10444.1. помешают 4.5 г стерильного углекислого кальция. Углекислый кальций стерилизуют по ГОСТ 10444.1.

Приготовленную основу стерилизуют при температуре (121 ± 1) *С в течение 20 мин.

При приготовлении среды к 100 см³ основы среды асептически прибавляют:

10 см* раствора гипосульфита натрия (Na,S,0, • 5Н,0);

2 см³ йодного раствора;

0,2 см³ раствора бриллиантового зеленого;

5 см³ раствора желчи.

Указанные растворы прибавляют к основе среды в приведенном выше порядке, перемешивая смесь после каждого прибавления.

Среду допускается использовать в течение одной недели после приготовления.

Указанные выше растворы, прибавляемые к основе среды, готовят следующим образом: раствор гипосульфита натрия: 50.0 г гипосульфита натрия помешают в колбу вместимостью 100 см³, растворяют в дистиллированной воде и доводят дистиллированной водой до метки. Раствор переливают в колбу или флакон и стерилизуют текучим паром в течение 30 мин или при температуре (121 ± 1) "С в течение 20 мин;

йодный раствор: 25,0 йодистого калия помешают в колбу вместимостью 100 см³, растворяют в небольшом количестве дистиллированной воды, прибавляют 20,0 г кристаллического йода, растворяют его. Объем раствора доводят дистиллированной водой до метки.

Раствор хранят в плотно закрытом темном сосуде; раствор бриллиантового кленого готовят по 4.1.1;

раствор желчи: 10.0 г сухой желчи растворяют в 100 см³ дистиллированной воды или используют натуральную желчь. Раствор желчи или натуральную желчь стерилизуют при температуре (121±1) "С в течение 20 мин.

4.2.5    Дифференциально-диагностические среды (сухие): висмут-сульфит агар (Вильсон-Блера);

среду Плоскирева: среду Эндо; среду Левина.

Среды готовят по прописи, указанной на этикетке.

4.2.6    Трехсахарный агар: 10.0 г пептона, 3,0 г сухого дрожжевого экстракта или 15 см* дрожжевого экстракта, приготовленного по ГОСТ 10444.1. 10.0 г лактозы. 10,0 г сахарозы. 1,0 г глюкозы, 0.3 г пнтрата железа (или 0,2 г аммоний-железо сульфата (NH,),Fe(S0₄)₂ • 6Н,0 или 0,2 г сернокислого железа FeS0₄ • 6Н ,0), 0,3 г гипосульфита натрия, 6 см' раствора фенолового красного, приготовленного по п. 4.1.2, 15,0 г агара растворяют при нагревании в 1000 см³ мясо-пептоииого бульона, приготовленного по ГОСТ 10444.1, охлаждают до 45 ' С—55 'С и устанааливают pH так. чтобы после стерилизации он состаалял при температуре 25 *С 7,2±0,2. Среду разливают в пробирки по 6—7 см³ и стерилизуют при температуре (121 + 1) *С в течение 10 мин.

4.2.7. Агар Кристенсена с мочевиной: среда готовится путем соединения основы среды и раствора мочевины.

Основа среды: 1.0 г пептона. 1.0 г глюкозы, 5,0 г хлористого натрия. 2,0 г безводного однозаме-шенного фосфорнокислого калия. 3 см³ раствора фенолового красного, приготовленного по 4.1.2, 15.0 агара растворяют при нагревании в 1000 см^г дистиллированной воды, охлаждают до 45 "С—55 "С и устанааливают pH так, чтобы после стерилизации он состаалял при температуре 25 ‘С 6,7±0,1.

Основу среды мерно разливают в колбы или флаконы и стерилизуют при температуре (121 ± 1) *С в течение 20 мин.

Раствор мочевины концентрации 400 г/дм³: 40,0 г мочевины помещают в колбу вместимостью 100 см⁵, растворяют в дистиллированной воде, объем раствора доводят дистиллированной водой до метки.

82

ГОСТ 30519-97/ГОСТ Р 50480-93

Раствор мочевины стерилизуют фильтрацией по ГОСТ 26670 или текучим паром в течение 30 мин.

Мри приготовлении среды к 950 см' основы прибавляют асептически 50cm^j раствора мочевины, разливают в стерильные пробирки по 6-7 см’.

4.2.8 После стерилизации среды, приготовленные по 4.2.6 и 4.2.7. скашивают так. чтобы оставался столбик высотой 2—2,5 см.

4.2.9. Полужидкий мясо-пептонный агар: готовят по ГОСТ 10444.1 так же, как мясо-пептонный агар, но при приготовлении добавляют 4,0—8,0 г агара на 1000 см^} мясо-пептонного бульона, перед стерилизацией среду разливают по 6—7 см' в пробирки.

4.2.10    Мясо-пептонный бульон с глюкозой: готовят по ГОСТ 10444.1. Для посевов используют среду, разлитую в пробирки по 6—7 см\

4.2.11    Бульон Хоттингера: готовят по ГОСТ 10444.1. Для посевов используют среду, разлитую в пробирки по 6—7 см¹.

4.2.12    Мясо-пептонный бульон с 0.05 % L-триптофана: 0.05 L-трипгофана растворяют в 100 cm^j мясо-пептонного бульона, приготовленного по ГОСТ 10444.1. разливают в пробирки по 6—7 см³ и стерилизуют при температуре (121±1) *С в течение 20 мин.

4.2.13    Среды с углеводами (среды Гисса): готовят по ГОСТ 10444.1 или используют сухие среды с углеводами, которые готовят по прописи, указанной на этикетке.

4.2.14    Мясо-пептонный агар: готовят по ГОСТ 10444.1 или используют среду, приготовленную из сухого питательного агара.

Среду из сухого питательного агара готовят по прописи, указанной на этикетке.

5 Проведение анализа

5.1    Неселекгивное предварительное обогащение

Навеску продукта, в массе (объеме) которой нормативно-технической доку ментацией на анализируемый продукт предусматривается отсутствие бактерий рода Salmonella, высевают в забуференную пептонную воду, приготовленную по 4.2.1. Соотношение массы (объема) продукта и забуферепной пептонной воды 1 : 9.

При посеве жидких высококнслотных продуктов для предотвращения снижения pH питательных сред на 0,5 и более pH продукта перед посевом доводят до 7.0±0,2.

При посеве твердых высококислотных продуктов доводят pH до 7,0+0.2 в посевах.

Доведение pH проводят асептически с помощью стерильных растворов гидроксида натрия и соляной кислоты, приготовленных по ГОСТ 10444.1. Количество добавляемого раствора гидроксида натрия устанавливают опытным путем.

Посевы инкубируют при температуре (36±1) "С в течение 18—20 ч.

5.2    Селективное обогащение

Культуры, полученные после инкубирования по 5.1. пересевают в две среды для селективного обогащения. Для этого по 10 см³ культуры переносят в 100 см³ магниевой среды, приготовленной по 4.2.2. и в 100 см' тетратионатиой среды, приготовленной по 4.2.4. или по 10 см’ культуры переносят в 100 см’ селенитовой среды, приготовленной по 4.2.3. ив 100 см³ тетратионатиой среды.

Посевы инкубируют в течение 24—48 ч на магниевой и селенитовой средах при температуре (36±1) *С, а на тетратионатиой среде при температу ре (43±1) *С.

5.3    Выделение и идентификация культур на агаризованных лифференциалыю-диагноетических средах

Культуры через 24 и 48 ч инкубирования по 5.2 пересевают (по ГОСТ 26670) на три агаризован-ные среды, приготовленные по 4.2.5: висмут-сульфит агар, среду Плоски рева и среду Эндо (или среду Левина).

Допускается использование одной чашки каждой из сред одновременного высева с двух селективных сред.

Посевы инкубируют при температуре (36± I) *С в течение 24 • - 48 ч.

После 24 ч инкубирования посевов проводят предварительный учет результатов, а после 48 ч -окончательный.

После инкубирования посевов отмечают на дифференциально-диагностических средах рост колоний, характерных для бактерий рода Salmonella:

на висмут-сульфит агаре колонии черные с характерным металлическим блеском, а также зеленоватые с темнозеленым ободком и с пигментированием среды под колониями;

83

ГОСТ30519—97/ГОСТ 1* 50480-93

на среде Плоскирева колонии бесцветные прозрачные, но более плотные, чем на среде Эндо;

на среде Эндо колонии круглые бесцветные или слегка розоватые, прозрачные:

на среде Левина колонии прозрачные, слабо-розовые или розовато-фиолетовые.

При отсутствии в посевах на дифференциально-диагностических средах характерных для бактерий рода Salmonella колоний даюг заключение об отсутствии бактерий рода Salmonella в анализируемой навеске продукта.

При наличии хотя бы на одной дифференциально-диагностической среде характерных для бактерий рода Salmonella колоний проводят их дальнейшее изучение.

5.4 Биохимическое подтверждение принадлежности выделенных характерных колоний к бактериям рода Salmonella

5.4.1    Не менее трех характерных колоний с каждой дифференциально-диагностической среды (см. 5.3) пересевают на скошенную поверхность мясо-пептонного агара или среды из сухого питательного агара, приготовленных по 4.2.14. и часть колоний пересевают штрихом по поверхности и уколом в столбик трехсахарного агара, приготовленного по 4.2.6.

Посевы инкубируют при температу ре (36±1) "С в течение 24 ч.

5.4.2    Из отобранных по 5.4.1 для биохимического подтверждения колоний приготовляют мазки и окрашивают по Граму.

Бактерии рода Salmonella являются грамоотрицательными палочками с закругленными концами.

5.4.3    После инкубирования посевов, как указано в 5.4.1. проводят учет результатов ферментации лактозы, глюкозы и сахарозы на трехсахарном агаре:

пожелтение скошенной части среды указывает на ферментацию лактозы или сахарозы или обоих сахаров:

пожелтение столбика среды с разрывом агара или пузырьками газа указывает на ферментацию глюкозы с образованием газа, пожелтение столбика среды без разрывов или пузырьков газа указывает на ферментацию глюкозы без образования газа;

почернение среды в столбике указывает на образование сероводорода.

Типичными для бактерий рода Salmonella являются культуры, ферментирующие глюкозу с образованием или без образования газа, не ферментирующие лактозу и сахарозу, образующие сероводород.

Дальнейшему изучению подвергают также лактозоположительные бактерии или бактерии, не образующие сероводород, но обязательно ферментирующие глюкозу с образованием или без образования газа.

5.4.4    У культур, отобранных согласно 5.4.3 и пересеянных предварительно, как указано в 5.4.1, на поверхность мясо-пептонного агара или среды, приготовленной из сухого питательного агара, изучают возможность расщепления мочевины, образования ацетоина и индола, ферментации сахарозы и маннита и подвижность.

5.4.5    Опре(кление расщепления мочевины

Культуры пересевают штрихом на поверхность агара Кристенсена с мочевиной, приготоатенного по 4.2.7.

Посевы инкубируют при температуре (36±1) "С в течение 24 ч.

При положительной реакции — растеплении мочевины пвет среды от розового до светло-вишневого. Для уреазоподожительных бактерий реакиия часто становится видимой после 2 ч инкубирования.

Бактерии рода Salmonella не расшепляют мочевину.

5.4.6    Определение обраювания ацетоина (реакция Фогес-Нроскауери)

Культуры пересевают в мясо-пептонный бульон с глюкозой, приготовленный по 4.2.10.

Посевы инкубируют при температуре (36±1) *С в течение 48 ч.

После инкубирования к 1 см³ отобранной культуральной жидкости прибавляют 0.6 см' раствора а-нафтола, приготовленного по 4.1.5. 0,2 см^л раствора гидроксида калия концентрации 400 г/дм¹. После прибавления каждого реактива пробирку встряхивают. Появление розового окрашивания через 15 мин указывает на положительную реакцию.

Бактерии рода Salmonella не образуют ацетоина (реакция Фогес-Проскауера отрицательная».

5.4.7    Определение обраювапия ин(к>.\а

Культуры пересевают в бульон Хоттингера, приготовленный по 4.2.11. или в мясо-пептонный бульон с L-триптофаном. приготовленный по 4.2.12.

Посевы инкубируют при температуре (36±1) “С в течение 24 ч.

После инкубирования к посевам приба&пяют по 1 см^: реактива Эрлиха или Ковача, приготовленных соответственно по 4.1.3 и 4.1.4.

Образование красного слоя указывает на положительную реакцию.

Бактерии рода Salmonella не образуют индол.

S4

ГОСТ 30519-97/ГОСТ Р 50480-93

5.4.8    Определение ферментации маннита и сахаром

Культуры пересевают в среды Гисса с маннитом или сахарозой, приготовленные по 4.2.13.

Посевы инкубируют при температуре (36±1) "С в течение 24 ч.

Бактерии рода Salmonella не сбраживают сахарозу, не сбраживают маннит. При сбраживании маннита цвет среды изменяется, образуется или не образуется газ.

5.4.9    Определение подвижности

Культуры пересевают уколом в полужидкий мясо-пептонный агар.

Посевы инкубируют при температуре <36± 1) *С в течение 24 ч.

При росте подвижных культур отмечается диффузный рост по всему столбику агара, при росте неподвижных культур — вдоль места укола.

Большинство штаммов бактерий рода Salmonella подвижны.

5.5    Результаты биохимического подтверждения культур оценивают, пользуясь таблицей приложения.

5.6    Серологическое подтверждение принадлежности культур к бактериям рола Salmonella

Серологическое подтверждение принадлежности к бактериям рода Salmonella проводят с культурами. давшими типичные биохимические реакции согласно приложению, и предварительно пересеянными, как указано в 5.4.1. на поверхность мясо-пептоиного агара или среды, приготовленной из сухого питательного агара.

5.6.1    Определение самоаггмтинирующих штаммов

Помещают каплю физиологического расгвора. приготовленного по ГОСТ 10444.1. на тщательно очищенное предметное стекло. Диспергируют в этой капле часть тестируемой колонии так, чтобы получилось гомогенная и гу стая суспензия.

Покачивают осторожно стекло в течение 30—60 с. Отмечают результаты на темном фоне, лучше с помощью увеличительного стекла. Если наблюдается в разной степени склеивание бактерий, то есть образование осадка, то считают, что тестируемые штаммы обладают самоагтлютинацией.

Штаммы бактерий, обладающие самоагтлютинацией, не подвергают дальнейшей серологической идентификации.

5.6.2    Определение наличия 0-антигенов

Штаммы, у которых не выявлено самоагтлютинации, испытывают в реакции агглютинации с агглютинирующими адсорбированными поливалентными сальмонеллезными сыворотками основных групп А, В. С. D. Е. а затем, если не выявлено 0-антигенов с сыворотками основных групп, ставят реакцию с сыворотками редких групп.

Подготовка сывороток к постановке реакции агглютинации и методика ее проведения указаны в наставлении, прилагаемом к сывороткам.

Агглютинация (наличие 0-антигенов) проявляется в виде склеивания бактериальной массы и полного или частичного просветления жидкости.

При отрицательной реакции агглютинации культура после тщательного смешивания с каплей сыворотки образует гомогенную смесь.

5.7    При определении биохимических и серологических характеристик выделенных культур в качестве контроля используют типичный по этим показателям штамп бактерий рода Salmonella, указанный в разделе 3.

6 Оценка результатов

6.1    Результаты оценивают по каждой пробе отдельно.

6.2    Интерпретация биохимических и серологических исньпаиий

Культуры, показавшие типичные биохимические и серологические реакции, относят к бактериям рода Salmonella.

Предположительно к бактериям рода Salmonella относят.

культуры, у которых не обнаружено самоагглютинации и 0-антигенов, но показавшие типичные биохимические реакции;

культуры, у которых обнаружена самоагглютинация и типичные биохимические реакции.

Культуры, у которых не обнаружено самоагглютинации, не давшие типичных биохимических и серологических реакций, не относят к бактериям рода Salmonella.

6.3    Результаты выявления бактерий рода Salmonella в определенной навеске продукта записывают: «бактерии рода Salmonella обнаружены в А" г (см¹) продукта* или «бактерии рода Salmonella не обнаружены в .V г (см⁵) продукта*.

vV-Macca (объем) навески продукта, в которой выяатяли бактерии рода Salmonella.

S5

ГОСТ 30519-97/ГОСТ 1* 50480-93

ПРИЛОЖЕНИЕ

(обязательное)

Биохимическая характеристика четырех подродов Salmonella и атипичных видов, входящих в подрод Salmonella I

И НФОРМАЦИОН Н Ы Е ДАН Н Ы Е